70. Apakah langkah berjaga -jaga untuk penentuan klorin sisa?
Klorin sangat tidak stabil dalam larutan akueus, terutamanya pada kepekatan rendah, dan kandungannya akan berkurangan dengan cepat. Kadar pengurangan klorin akan dipercepatkan apabila terdedah kepada cahaya matahari dan cahaya kuat lain atau gelisah. Oleh itu, sampel tidak boleh disimpan selepas pensampelan, dan penentuan klorin mesti dimulakan dengan segera, sambil mengelakkan pendedahan cahaya dan pergolakan sampel air.
Semua operasi semasa proses penentuan mesti mengelakkan pendedahan cahaya matahari langsung, dan sebaiknya dijalankan pada suhu yang paling rendah dan cahaya lembut. Di samping itu, semua kaedah kolorimetrik memerlukan kosong warna dan kekeruhan untuk mengimbangi warna dan kromatik air mentah, terutamanya apabila kekeruhan dan kromatiknya tinggi, nilai kosong mesti ditentukan.
Apabila menggunakan kaedah visual visual O-tolidine untuk menentukan klorin sisa, jika sampel air bercampur sama rata dengan larutan O-tolidine standard dan kemudian kaedah kolorimetrik dilakukan dengan serta-merta, hasil yang diukur adalah klorin sisa bebas. Jika sampel air diletakkan di tempat yang gelap selama 10 minit untuk menghasilkan kromatik tertinggi sebelum kaedah kolorimetrik dilakukan, hasilnya adalah jumlah klorin sisa. Jumlah klorin sisa dikurangkan klorin sisa bebas adalah klorin sisa gabungan.
Apabila menggunakan kaedah visual visual o-tolidine untuk menentukan, jika klorin sisa besar, warna oren-kuning akan dihasilkan; Sekiranya alkaliniti sampel air terlalu tinggi dan klorin sisa kecil, warna hijau atau warna biru muda akan dihasilkan. Pada masa ini, 1 ml penyelesaian standard O-tolidine boleh ditambah untuk menghasilkan warna kuning cahaya biasa.
71. Apakah perbezaan antara fasa biologi kaedah biofilm dan enapcemar yang diaktifkan?
Ciri -ciri fasa biologi sistem rawatan biofilm adalah berbeza daripada proses enapcemar yang diaktifkan, terutamanya dari segi spesies mikrob dan pengedaran.
Secara umumnya, disebabkan oleh perubahan secara beransur -ansur dalam kualiti air dan peningkatan keadaan persekitaran untuk pertumbuhan mikrob, jenis dan kuantiti mikroorganisma dalam sistem biofilm adalah lebih daripada yang ada dalam proses enapcemar yang diaktifkan, dan rantaian makanan yang panjang dan lebih kompleks, terutama dalam bilangan filamen, protozoa dan metazoa, bakteria. Alga boleh muncul di kawasan yang terdedah kepada cahaya matahari, dan serangga seperti lalat penapis juga boleh muncul. Ciri -ciri pengedaran adalah bahawa di sepanjang ketebalan biofilm (dari permukaan ke dalam) atau arah yang berpengaruh (masa hubungan yang berbeza dengan influen), jenis dan kuantiti mikroorganisma menunjukkan perbezaan yang besar. Pada peringkat pertama rawatan pelbagai peringkat atau bahagian atas lapisan pengisi aliran ke bawah, biofilm sering dikuasai oleh bakteria flocculent, dan ketebalan filem juga agak besar (2-3mm); Dengan peningkatan bilangan peringkat atau bahagian bawah lapisan pengisi aliran ke bawah, kerana kualiti air yang dihubungi telah dirawat sebahagiannya, lebih banyak bakteria filamen, protozoa dan metazoa secara beransur -ansur akan muncul dalam biofilm; Jenis-jenis mikroorganisma semakin meningkat, tetapi ketebalan biofilm terus menurun (1-2mm). Mikroorganisma di permukaan biofilm adalah semua aerobik, dan apabila ketebalan meningkat, mikroorganisma secara beransur -ansur menjadi fakultatif atau bahkan anaerobik.
Biofilm ditetapkan pada bahan penapis atau pengisi, dan masa pengekalan pepejal biologi SRT (umur enapcemar) adalah panjang, jadi ia boleh tumbuh mikroorganisma dengan masa generasi yang panjang dan kadar percambahan yang sangat rendah, seperti bakteria nitrifying. Sebilangan besar bakteria filamen juga boleh muncul di biofilm, tetapi pukal enapcemar tidak akan berlaku. Berbanding dengan kaedah enapcemar yang diaktifkan, perkadaran pemakanan haiwan dalam organisma pada biofilm lebih besar, kadar survival mikro-haiwan juga lebih tinggi, dan ia boleh mendiami organisma peringkat tinggi nutrien. Oligochaetes dan serangga mendiami di atas ciliates pemangsa, rotifer, dan nematoda. Oleh itu, rantaian makanan pada biofilm lebih panjang daripada rantaian makanan di enapcemar yang diaktifkan, oleh itu jumlah enapcemar yang dihasilkan oleh kaedah biofilm adalah kurang daripada kaedah enapcemar yang diaktifkan.
Mikroorganisma ciri pada setiap peringkat atau setiap lapisan pengisi akan berbeza kerana kualiti air kumbahan yang berbeza, iaitu perubahan kualiti air akan menyebabkan perubahan dalam jenis dan bilangan mikroorganisma dalam biofilm. Apabila kepekatan yang berpengaruh meningkat, dapat diperhatikan bahawa mikroorganisma ciri -ciri tahap asal bergerak ke bawah, iaitu, mikroorganisma pada asalnya di peringkat depan atau lapisan atas pengisi boleh muncul di paras belakang atau lapisan pengisi yang lebih rendah. Oleh itu, perubahan yang sama dapat dilihat melalui pemerhatian fasa biologi untuk menyimpulkan perubahan dalam kepekatan air sisa atau beban enapcemar.
72. Apakah makna penunjuk jumlah bakteria dalam air?
Jumlah kiraan bakteria merujuk kepada bilangan koloni yang ditanam dalam 1ml sampel air dalam medium agar nutrien selepas kultur pada 37oC selama 24h. Unit pengukuran biasanya jumlah bakteria yang terkandung dalam setiap ml air. Jumlah bakteria di dalam air sering berkaitan dengan tahap pencemaran organik di dalam badan air, dan merupakan salah satu petunjuk penting untuk menilai tahap pencemaran air dan kemungkinan bahaya kepada tubuh manusia.
Kaedah analisis jumlah bakteria menggunakan kaedah plat standard untuk mengira bakteria dalam sampel air, yang merupakan kaedah untuk menentukan ketumpatan bakteria heterotropik aerobik dan fakultatif di dalam air. Walau bagaimanapun, kerana tiada asas nutrien atau sebarang keadaan alam sekitar dapat memenuhi keperluan fisiologi semua bakteria dalam sampel air, dan bakteria di dalam air boleh wujud dalam bentuk individu, pasangan, rantai, kelompok atau kelompok, kiraan koloni yang diukur sebenarnya lebih rendah daripada bilangan bakteria yang sebenarnya bertahan dalam sampel air yang diuji.
73. Apakah langkah berjaga -jaga untuk menentukan jumlah bakteria?
Gunakan kaedah operasi aseptik untuk menyerap 1ml sampel air atau 2 hingga 3 sampel air yang dicairkan dengan gandaan pencairan yang sesuai, suntikannya ke dalam plat yang disterilkan, kemudian tuangkan 15ml medium agar nutrien dan campurkan dengan teliti dengan sampel air, membuat dua sampel selari untuk setiap sampel air, dan selain itu.
Selepas budaya, kiraan koloni plat perlu dilakukan dengan serta -merta. Sekiranya kiraan mesti ditangguhkan, plat boleh disimpan dalam persekitaran 5-10oC, tetapi tidak lebih daripada 24 jam, dan amalan ini tidak boleh digunakan sebagai kaedah operasi rutin.
Apabila mengira koloni plat, anda boleh memerhatikan dengan mata kasar. Untuk mengelakkan ketinggalan, gunakan kaca pembesar untuk memeriksa sama ada perlu. Bagi koloni -koloni yang kelihatan sama dan dekat antara satu sama lain tetapi tidak menyentuh, selagi jarak kurang daripada diameter koloni terkecil, mereka harus dikira secara berasingan. Tanah jajahan yang berada dalam hubungan rapat tetapi mempunyai penampilan yang berbeza (morfologi atau warna) juga harus dikira secara berasingan.
Apabila mengira kiraan koloni purata pencairan yang sama, jika salah satu plat mempunyai koloni serpihan yang besar, ia tidak boleh digunakan, dan plat tanpa koloni serpihan harus digunakan sebagai kiraan koloni pencairan. Sekiranya koloni serpihan kurang daripada separuh plat dan pengedaran koloni yang tersisa adalah sangat seragam, kiraan koloni 1/2 plat dengan pertumbuhan seragam boleh didarabkan oleh 2 untuk mewakili kiraan koloni seluruh plat.
Hasil jumlah jumlah bakteria adalah jumlah koloni dalam setiap plat atau bilangan purata koloni dalam plat eksperimen selari pengenceran yang sama didarabkan oleh pencairan berganda. Apabila keputusan akhir berada dalam 100, hasilnya direkodkan mengikut bilangan koloni sebenar; Apabila ia lebih besar daripada 100, dua angka penting digunakan dan dinyatakan sebagai eksponen 10. Jika bilangan koloni tidak dapat dikira, pencairan berbilang harus diperhatikan ketika melaporkan hasilnya.
74. Bagaimana untuk mengira jumlah bakteria dalam sampel air berdasarkan hasil kiraan koloni?
Apabila mengira keputusan ujian jumlah bakteria, adalah perlu untuk membandingkan dan mengira berdasarkan jumlah purata koloni pada pencairan yang berbeza. Kaedahnya adalah seperti berikut:
⑴ Pertama, pilih kes di mana bilangan purata koloni adalah antara 30 dan 300 untuk pengiraan. Apabila purata bilangan koloni pada hanya satu pencairan memenuhi julat ini, jumlah purata koloni yang didarab dengan pencairannya berganda digunakan sebagai hasil daripada jumlah bakteria dalam sampel air.
⑵ Jika purata bilangan koloni di dua pelarut adalah antara 30 dan 300, kaedah pengiraan harus ditentukan mengikut nisbah kedua -duanya. Sekiranya nisbahnya kurang daripada 2, purata kiraan koloni purata yang didarabkan oleh pencairan berganda hendaklah digunakan sebagai hasil daripada jumlah bakteria sampel air; Sekiranya nisbah lebih besar daripada 2, lebih kecil daripada jumlah koloni purata yang didarabkan oleh pencairannya berganda hendaklah digunakan sebagai hasil daripada jumlah bakteria sampel air.
⑶Jika kiraan koloni purata semua pencairan adalah lebih besar daripada 300, kiraan koloni purata pencairan terbesar yang banyak didarabkan oleh pencairannya berbilang hendaklah digunakan sebagai hasil jumlah jumlah bakteria sampel air.
⑷Jika kiraan koloni purata semua pelarut adalah kurang daripada 30, kiraan koloni purata pencairan terkecil berbilang didarabkan oleh pencairannya berganda hendaklah digunakan sebagai hasil dari jumlah bakteria sampel air.
⑸Jika kiraan koloni purata semua pelarut tidak antara 30 dan 300, jumlah koloni purata yang paling dekat dengan 30 atau 300 yang didarabkan oleh pencairannya berganda hendaklah digunakan sebagai hasil jumlah jumlah bakteria sampel air.
75. Apakah maksud kiraan koliform (nilai)?
Bakteria coliform merujuk kepada kelas anaerobik aerobik atau fakultatif, penapaian laktosa, gram-negatif, rod bebas spora, jadi mereka kadang-kadang juga dipanggil koliform fecal atau Escherichia coli. Bakteria coliform boleh menghasilkan asid dan gas selepas dibiakkan dalam medium laktosa pada 37oC selama 24 jam. Bilangan (nilai) bakteria coliform biasanya diukur dalam bilangan bakteria coliform yang terkandung dalam 1L atau 100ml air.
Sekiranya sumber air tercemar oleh najis, ia mungkin tercemar oleh patogen usus dan menyebabkan penyakit berjangkit usus. Oleh kerana patogen usus menyumbang sebahagian kecil daripada bilangan mikroorganisma, ia sering sangat sukar untuk memisahkan patogen dari air, terutamanya air paip. Bakteria coliform adalah jenis bakteria yang paling biasa dan terbesar di kalangan bakteria aerobik usus, jadi ia sering digunakan sebagai bakteria penunjuk untuk pencemaran fecal. Iaitu, bilangan bakteria koliform di dalam air digunakan untuk menilai sama ada sumber air tercemar oleh najis, dan kemungkinan menyimpulkan bahawa sumber air tercemar oleh patogen usus dikesan.
76. Apakah kaedah untuk menentukan bilangan bakteria coliform?
Terdapat dua kaedah yang biasa digunakan untuk menentukan jumlah bakteria koliform: kaedah penapaian pelbagai tiub dan kaedah penapis membran.
Kaedah penapaian pelbagai tiub adalah berdasarkan ciri-ciri bakteria coliform seperti penapaian laktosa, pewarnaan gram-negatif, tiada spora, dan berbentuk batang. Ia diuji melalui tiga langkah untuk menentukan jumlah bakteria coliform dalam sampel air. Kaedah penapaian pelbagai tiub menggunakan nombor yang paling mungkin untuk menyatakan hasil eksperimen, juga dikenali sebagai MPN. Ia sebenarnya merupakan kaedah untuk menganggarkan ketumpatan dan kualiti sanitari E. coli di badan air berdasarkan teori statistik. Anggaran ini cenderung lebih besar daripada bilangan sebenar. Nilai anggaran kiraan koliform ditentukan oleh pencairan yang menunjukkan hasil positif dan negatif. Apabila mereka bentuk bilangan pengulangan yang diperlukan untuk ujian sampel air, ia harus berdasarkan ketepatan data yang diperlukan.
Kaedah penapis membran menggunakan membran microporous yang disterilkan khas untuk menapis sampel air. Selepas bakteria terperangkap pada membran, membran dilampirkan pada medium budaya natrium sulfite fuchsin untuk budaya. Kerana bakteria coliform boleh menanam laktosa, koloni ungu-merah dengan kilauan logam akan muncul selepas penanaman pada membran penapis. Dengan mengira bilangan koloni dengan ciri ini pada membran penapis, bilangan bakteria coliform yang terkandung dalam setiap liter sampel air boleh dikira. Kaedah membran penapis boleh mengukur jumlah sampel air yang lebih besar dan boleh mendapatkan hasil lebih cepat daripada kaedah penapaian pelbagai tiub, tetapi kesannya kurang apabila kekeruhan tinggi dan ketumpatan bukan E. Bakteria coli tinggi.
77. Apakah klorin sisa?
Klorin sisa adalah klorin yang tersisa di dalam air selepas air dibasuh dengan klorin untuk tempoh tertentu. Fungsinya adalah untuk mengekalkan keupayaan bakterisida yang berterusan. Dari masa air memasuki rangkaian paip ke titik air, kesan disinfektan di dalam air mesti dikekalkan untuk mengelakkan kemungkinan kerosakan patogen dan pertumbuhan semula. Ini memerlukan jumlah disinfektan yang ditambah ke dalam air bukan sahaja memenuhi keperluan membunuh patogen di dalam air, tetapi juga mengekalkan jumlah sisa tertentu untuk menghalang pertumbuhan semula patogen semasa proses pengangkutan air. Jika pembasmian kuman klorin digunakan, maka bahagian disinfektan yang melebihi keperluan pembasmian kuman pada masa itu adalah klorin sisa.
Klorin sisa mempunyai dua bentuk: klorin sisa percuma (CL2, HOCL dan OCL-) dan klorin sisa gabungan (NH2CL, NHCL2 dan NCL3). Kedua -dua bentuk ini boleh wujud dalam sampel air yang sama pada masa yang sama, dan jumlah kedua dipanggil total sisa klorin. Klorin sisa percuma mempunyai keupayaan bakterisida yang kuat, tetapi mudah diuraikan. Klorin sisa gabungan mempunyai keupayaan bakterisida yang lemah, tetapi bertahan lebih lama di dalam air. Secara amnya, apabila tidak ada ammonia atau ammonium di dalam air, klorin sisa adalah klorin sisa percuma, sementara apabila terdapat ammonia atau ammonium di dalam air, klorin sisa biasanya hanya mengandungi klorin sisa gabungan, dan kadang -kadang sisa klorin dan gabungan chlorine chlorine. Jumlah klorin sisa mesti sesuai. Terlalu rendah tidak akan memainkan peranan dalam mencegah dan merawat patogen. Terlalu tinggi bukan sahaja akan meningkatkan kos pembasmian kuman, tetapi juga boleh menyebabkan kemudaratan kepada tubuh manusia apabila bersentuhan dengan tubuh manusia.
Secara konseptual, klorin sisa merujuk kepada gas klorin dan siri klorin disinfektan. Apabila menggunakan pembasmian kuman bukan klorin lain seperti klorin dioksida, klorin sisa harus difahami sebagai baki disinfektan yang tersisa di dalam air selepas tempoh tertentu.
78. Apakah kaedah untuk menentukan klorin sisa? Apakah skop masing -masing yang berkenaan?
Penentuan klorin sisa boleh dilakukan oleh titrasi iodin, o-tolidine visual colorimetry, n, n-diethyl-p-phenylenediamine (dpd) titrasi ferus (GB 11897-89) Tentukan jumlah klorin sisa dalam sampel air; Kaedah warna visual o-tolidine boleh menentukan jumlah klorin sisa dan klorin sisa percuma masing-masing dengan mengubah prosedur operasi; Kaedah titrasi N, N-di-dietil-p-phenylenediamine atau kaedah spektrofotometri boleh menentukan klorin bebas atau jumlah klorin dalam julat kepekatan 0.03-5 mg/L, dan dengan mengubah prosedur operasi, monochloramine, dikloramine dan beberapa komponen kombinasi yang digabungkan.
Kaedah titrasi iodin sesuai untuk sampel air dengan jumlah kandungan klorin sisa lebih besar daripada 1 mg/L, dan merupakan kaedah yang biasa digunakan untuk menentukan jumlah klorin yang ditambah. Kaedah visual visual o-tolidine adalah mudah untuk beroperasi dan merupakan kaedah biasa untuk menentukan klorin sisa dalam air minuman. Julat pengukuran ialah 0.01-10 mg/L. Kaedah titrasi N, N-dietil-p-phenylenediamine atau kaedah spektrofotometri mempunyai kepekaan yang tinggi dan dapat menentukan sampel air dengan kandungan klorin sisa yang rendah. Ia sesuai untuk menentukan jumlah klorin yang ada dalam kumbahan yang mengandungi bahan organik. Rentang pengukuran kedua-dua kaedah adalah 0.05-1.5 mg/L dan 0.03-5 mg/L, masing-masing.